撰文 | 木兰之枻
责编 | 兮
CRISPR系统为基因编辑领域带来了革命性的突破。除靶向DNA外,研究者还发现,自然界存在可靶向RNA的CRISPR系统,它们可用于RNA的检测标记、表达调控、表观遗传修饰、疾病诊断、RNA定位以及RNA碱基编辑(详见BioArt报道:『珍藏版』综述 | RNA靶向的CRISPR系统——从宏基因组到RNA调控)【1】。已知的RNA靶向型CRISPR系统中,IV型CRISPR-Cas13系统最引人注目,并在RNA敲减及碱基编辑领域应用广泛【2-6】。体积是限制Cas13相关工具应用的关键因素之一,近年来多项研究关注于小型Cas13核酸酶的挖掘和开发,并取得众多成果(详见BioArt报道:Nat Methods 新工具| 杨辉团队发现和应用新Cas13X/Y系统进行高效的RNA编辑)【7】。
2021年8月30日,来自美国霍华德休斯研究所(HHMI)和Broad研究所的张锋实验室在Nature Biotechnology杂志上发表了题为Compact RNA editors with small Cas13 proteins的论文。文章通过数据挖掘找到多种超小型Cas13bt核酸酶,并以此为基础构建出可实现C-U和A-I突变的新型RNA碱基编辑器。新开发的RNA碱基编辑器具有体积小的优点,可通过单一的AAV载体系统递送,这将极大推动RNA碱基编辑器在基因治疗等领域的广泛应用。
为寻找体积更小的CRISPR-Cas13系统,研究者对原核和病毒基因组及宏基因组进行充分挖掘,并从中找到5843种潜在的系统,进而发现两种超小型的Cas13bt和Cas13ct亚型。这其中Cas13bt体积更小,大小为775-804氨基酸。考虑到Cas13b家族蛋白在哺乳动物系统中的RNA编辑活性更强,研究者后续重点关注Cas13bt亚型的分析与开发。
研究者首先在大肠杆菌中对Cas13bt的crRNA组分和靶向RNA的能力进行检测,结果显示Cas13bt1和Cas13bt3靶向RNA的能力最优。研究还指出,与已知的Cas13家族蛋白相似,Cas13bt3也具有旁切活性(指Cas13在切割目标RNA后仍保持活性,并可对非目标RNA进行无差别切割),这一特性是Cas13用于分子诊断技术研发的关键。
随后研究者对Cas13bt在哺乳动物细胞系中敲减目标RNA的能力进行分析,结果显示,在人源HEK293FT细胞中,Cas13bt1和Cas13bt3能有效敲减外源性和内源性的目标RNA,从而取得与RNAi类似的效果。
研究者还进一步将失活型Cas13bt1和Cas13bt3与RNA腺嘌呤脱氨基酶突变体(ADAR2dd)融合,构建出可介导A-I突变的RNA碱基编辑器REPAIR.t1和REPAIR.t3,以及介导C-U突变的RNA碱基编辑器RESCUE.t1和RESCUE.t3。研究还指出,Cas13bt为基础的RNA碱基编辑器可通过单一的AAV载体系统有效递送并实现特定碱基的精准编辑。最后,研究者还通过酵母定向演化系统对RNA碱基编辑器在RNA水平的脱靶效应进行优化,发现ADAR2dd的E620G和Q696L突变能有效降低RNA水平的脱靶效应。
总体而言,本研究以Cas13系统体积过大为切入点,通过数据挖掘和后续实验开发出新的超小型Cas13bt系统,并通过改造将Cas13bt用于RNA敲减和碱基精准编辑,实现了Cas13相关工具的小型化。本研究进一步丰富了RNA靶向的工具库,并将推动其在基因治疗等临床转化研究中的应用。
原文链接
https://doi.org/10.1038/s41587-021-01030-2
参考文献
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7. Xu, C., Zhou, Y., Xiao, Q. et al. Programmable RNA editing with compact CRISPR–Cas13 systems from uncultivated microbes. Nat Methods 18, 499–506 (2021).
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