动物模型与评估丨根性神经痛动物模型

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动物模型的复制在根性神经痛的研究中占重要地位，通过复制动物模型，能够模拟根性神经性疼痛，其中大部分是通过对脊神经、脊神经根和背根神经节等进行操作产生，不同点在于对脊神经操作的强度、位置和方式不同，同时由于动物无法用语言表达所受到的伤害性刺激，因此观察操作后动物各种异常行为的表现也是动物模型制备成功的关键。

根性神经痛模型动物的选择

当前对根性神经痛的发生机制及药理作用等基础研究依赖于动物模型，选择一个合适的动物模型并合理利用实验动物自身特性（解剖、器官、结构、反应性等），不仅能够减少实验误差、降低操作难度，而且可以有效地提高研究质量。当前用于神经痛模型的动物包含了鼠、兔、羊、猪、猴及狒狒等。虽然灵长类的猴、狒狒等动物与人类在解剖、生理及病理特征上更为接近，制作出的模型更理想且具有实际意义，但由于动物实验伦理和价格昂贵等的限制，且模型的重复性差、实验周期长，难以广泛普及应用。因此，目前临床最广泛应用的还是以鼠、兔等廉价而易操作和获取的动物为主，如SD大鼠、Wistar大鼠、新西兰白兔等。

异常行为观测指标

模型动物在受到有害刺激时可以感受到和人类疼痛相似的感觉并做出反应，但由于动物无法用言语表达疼痛的程度且无法直接测量疼痛程度，因此对神经损伤引起的各种神经行为学异常的观察及正确分析成为动物模型成功和研究根性神经痛的关键。其主要观测指标分为刺激诱发性和非刺激诱发性两种。刺激诱发性伤害感受观测指标：①机械性痛觉过敏：在动物的尾巴或后爪上施加伤害性机械刺激（常用von Frey或Semmes-Weinstein系统压迫，测试后退收缩次数），观测动物缩脚、逃跑、嘶叫和攻击性行为等；②热刺激痛觉过敏：应用辐射、红外线等发热源照射动物脚底或运用热探针、热浸泡方式作用于动物脚底产生伤害性刺激，观测咬、舔或畏缩四肢等行为（回缩潜伏期）；③冷刺激痛觉过敏：和热刺激观测指标相同，其方法是将动物放置在制冷金属板上或运用冷浸泡、丙酮作用于动物脚底产生伤害性刺激。非刺激诱发性伤害感受观测指标：①自噬或自切行为（动物咬除由于损伤造成神经感觉缺失的身体部分）；②自发性保护性行为（躲避、蜷缩、形态异常等）；③鬼脸行为（眼眶收紧、鼻子隆起、脸颊隆起、耳朵位置和胡须位置变化等）；④步态行为：跛行、拖腿和不使用肢体等行为（常使用步态分析系统进行观测分析）；⑤其他行为（舔咬、退缩、搔抓、嘶叫等）。

根性神经痛动物模型种类及模型复制方法

根性神经痛的发生机制主要有机械压迫、神经根炎症反应和神经体液反应3种。常用的根性神经痛动物模型种类及模型复制方法如下：

• L5/L6脊神经根结扎损伤模型

L5/L6脊神经根结扎损伤模型（spinal nerve ligation, SNL）由KIM和CHUNG提出，其模型复制方法是运用戊巴比妥钠麻醉大鼠，无菌条件下取俯卧位，在腰椎单侧 L5～S1左侧切开约5mm的纵向切口，打开背腰筋膜，钝性分离筋膜和椎旁肌肉组织，去除横突后暴露 L5、L6神经根，在远离背根神经节的位置用6-0的丝线对 L5/L6脊神经紧密结扎，止血后逐层缝合皮肤。SNL模型使大鼠长期出现机械系异常疼痛、痛觉过敏和持续性疼痛等，这与根性神经痛的病理表现相近，同时该模型也为研究根性神经痛的机制、病理和解剖提供了有力的实验基础。运用SNL大鼠模型研究保留椎旁肌的重要性，通过比较保留和切除椎旁肌两种模型导致的神经病变行为、肌肉损伤和炎症的生化标志物水平，发现保留椎旁肌的SNL大鼠模型术后会产生较少的肌肉损伤和炎症反应，再次证明该模型是一种具有较高可重复性、易于获取且侵入性小的神经性疼痛模型。SNL模型能够较好地定位区分神经根节段且易对其进行损伤操作，有利于研究神经根在根性神经痛机制中的作用，但结扎的松紧度和固定位置不易控制，会产生一定的个体差异，存在一定局限性。

• 脊神经根压迫模型

脊神经根压迫模型（chronic spinal nerve root compression model, CNRC）由王拥军等提出。其模型复制方法是通过腹膜内注射氯胺酮麻醉大鼠，无菌条件下以L4、 L5椎体间隙为中心取正中切口，逐层切开皮肤，钝性分离肌肉组织后到达椎板，于L4/ L5处对右侧椎板、棘突和部分小关节进行切除，在手术显微镜下充分暴露右侧 L5神经根后使用硅胶管片放置在神经根周围对其进行压迫，局部固定后消毒缝合。研究发现，CNRC模型中硅胶管对脊神经根的慢性压迫会对神经根造成可修复的损伤，从而在脊髓中激活可修复的小胶质细胞，激活的胶质细胞可以释放疼痛通路中神经元的可溶性因子导致痛觉过敏和异常性疼痛，这与腰椎管狭窄症和腰椎间盘突出症的临床表现及病理变化一致，为研究根性神经痛提供了较理想的模型。CNRC模型通过硅胶片对脊神经根进行操作，较符合脊神经根慢性受压的病理学解剖基础且方便调控损伤的位置和程度，具有较高的可调控性，但硅胶管存在移位、脱落风险，会对实验结果产生一定的影响。

• 慢性压迫背根神经节模型

慢性压迫背根神经节模型（chronic compression of dorsal root ganglia, CCD）是运用戊巴比妥钠麻醉大鼠，无菌条件下取俯卧位，在腰椎左侧L4～L6间垂直切开皮肤，逐层切开分离皮下肌肉组织后并充分暴露左侧 L5椎间孔，然后先用一个钝性L型细针倾斜30°插入 L5椎间孔约4mm，若出现术侧下肢大腿肌肉轻微、短暂的抽搐则表明到达背根神经节，最后拔出L型针并将一根长4mm、直径0.5～0.8mm的不锈钢棒沿原路径插入 L5椎间孔，出现上述表现后提示模型复制成功，最后逐层缝合皮肤并使用抗生素预防感染。有研究发现钢棒的内植入会导致神经元体细胞过度兴奋，出现与痛觉过敏、自发性疼痛和机械异常性疼痛相关的自发动作电位，同时会保留外周传递的功能，出现炎症因子的累积和神经胶质细胞的激活，这与椎间盘突出和椎间孔狭窄引起根性神经疼痛的机制相契合。CCD模型操作简单便捷、创伤小、且无须打开椎管暴露脊神经根，大大降低了感染风险，大鼠成活率高。但由于不同体型大鼠需定制不同大小钢棒器械，费用较高且存在移位、脱落风险，存在一定局限性。

• 脊神经根移位模型

该模型由FINSKAS等提出，又称注射针神经根移位模型。其模型复制方法是采用蒸发异氟烷麻醉大鼠，无菌条件下在大鼠的左侧L3、L4行小关节和椎板切除术后暴露椎间盘和L4神经根，然后通过切口针（直径0.4mm）切开L3/L4椎间盘，利用穿刺针穿刺椎间盘后将L4神经根侧向移位以达到损伤神经根的效果，最后将穿刺针头固定在椎体下的骨骼中以产生持久的神经根移位。虽然在针刺过程中容易损伤其他组织器官，但该模型大鼠神经根损伤比单纯的髓核突出和背根神经节损伤会产生更多的疼痛行为变化（仅限于术侧后爪行为），是更贴近于临床研究神经根性疼痛的模型之一。有研究发现椎间盘穿刺的深度能够影响结构性椎间盘退变的速度和严重程度，且疼痛行为与椎间盘高度降低和炎症状态有关，而由于背根神经节敏感性增强可能导致促炎细胞因子在疼痛水平中起更重要的作用，这有助于研究疼痛的机制和治疗方法。

• 髓核移植压迫/非压迫（刺激）神经根模型

SHAMJI等和KIM等均利用大鼠自体髓核移植压迫神经。模型复制方法是腹膜内注射戊巴比妥麻醉大鼠，在近端尾部背侧做一切口（约1cm），横向收缩分离肌腱后暴露尾部椎间盘，然后穿刺该椎间盘并将髓核收集到刮匙后缝合；取背中线切口，在 L5棘突左侧切开胸腰筋膜，侧向牵开椎旁肌，暴露小关节和椎板间隙，然后进行部分单侧椎板切开术和内侧小关节切除术，露出左侧 L5背根神经节，将取出的自体髓核组织放置在暴露的 L5背根神经节并压迫，逐层缝合伤口。随着现代医学的进步，有研究发现在无机械压迫的情况下，髓核组织也能够诱导神经根发生炎症反应引发疼痛。CHO等采用同样的模型复制方法将大鼠自体髓核组织放置到 L5神经根旁但不对其压迫，术后通过对大鼠进行机械疼痛阈值观测，显示大鼠术侧后爪疼痛机械退缩阈值明显降低，在疼痛行为学方面有稳定表现，证明了髓核本身也能够引起神经根炎症反应引发疼痛。此类模型利用大鼠自身组织进行操作，产生的伤害小，大大降低了操作难度和费用，可以较好地模拟神经根受压和炎症反应的病理状态，但该模型只对压迫物大小进行了量化，未考虑到个体对移植髓核组织的免疫吸收反应，可能会对标准化的研究产生影响。

• 化学神经根炎症模型

对大鼠腹腔注射水合氯醛进行麻醉，无菌条件下以双侧髂前上棘连线的中点为中心取正中切口（约2cm），顺着棘突方向逐层切开皮肤、皮下组织，切开深筋膜后钝性分离椎旁肌暴露横突，用咬骨钳去除横突后暴露L4、 L5神经根，将体积分数4％甲醛浸泡的无菌滤纸块（约0.4cm×0.6cm）放置在L4/ L5神经旁边并适当包绕，固定后逐层缝合。传统观点认为，机械压迫是引发根性神经痛的主要因素，但随着分子生物学的深入研究发现，某些化学性因素的作用导致纤维环破裂髓核漏出，漏出的髓核内容物的化学刺激和免疫反应能够引起神经根的炎症状态引发神经根性疼痛。该模型在无机械压力条件下利用一定浓度的甲醛溶液浸泡滤纸后置于大鼠神经根旁，模拟炎症状态，引发神经根损害产生根性神经疼痛，是一种可行的模型复制方法。但由于不同种类和浓度的化学物质会产生较大的实验差异，因此需要结合大量的对照实验进行验证。

用于根性神经痛的理想模型动物也应具有与人类解剖有着较高的相似性和可比拟性，还应具有重复性高、可调控性高和标准化的特征。

文献引用：

• 根性神经痛免疫学研究进展[J]. 温爽;孙涛.中国疼痛医学杂志,2019(07)

• 化学神经根炎症模型大鼠的制备及评价[J]. 赵彩萍;朱美玲;王婷婷;柳雪蕾;刘翠玲.中国组织工程研究,2019(07)

• Radicular Pain Syndromes: Cervical, Lumbar, and Spinal Stenosis.[J]. Patel Ekta A;;Perloff Michael D.Seminars in neurology,2018

• The grimace scale reliably assesses chronic pain in a rodent model of trigeminal neuropathic pain[J]. Titilola Akintola;;Charles Raver;;Paige Studlack;;Olivia Uddin;;Radi Masri;;Asaf Keller.Neurobiology of Pain,2017

• 黄军凯,陈祁青,赵继荣,等.根性神经痛动物模型的研究进展[J].中国现代医学杂志,2022,32(21):52-56.

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