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Nat Immunol | 敲除SMAD4增强人源NK细胞抗肿瘤功能

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撰文 | 风

同种异体NK细胞以及CAR-NK过继治疗在一些血液系统恶性肿瘤中表现出良好的临床疗效,但在实体瘤中效果有限,主要归因于肿瘤微环境(tumor microenvironment,TME)对于NK的抑制作用【1,2】(详见BioArt报道:)。其中,TGFβ-SMAD信号通路介导的抑制信号发挥重要作用【3】。在NK细胞中,TGFβ通过SMAD2/3/4抑制IFNγ的产生和细胞毒性,也能抑制NK的增殖和活化受体(NKp30和NKG2D)的表达【4】。许多TGFβ通路抑制剂被尝试用于临床【5】。然而,系统性TGFβ抑制剂增加药物不良事件风险。其他干预NK细胞TGFβ的方法如敲除TGFβ受体正在测试中。因此,更多的靶向策略值得进一步探索。

近日,西班牙巴塞罗那庞培法布拉大学Aura Muntasell团队在Nature Immunology杂志在线发表了题为Enhancing human NK cell antitumor function by knocking out SMAD4 to counteract TGFβ and activin A suppression的研究文章。该文章揭示敲除SMAD4是一种增强NK细胞抗肿瘤活性的有效策略,为改善NK细胞的肿瘤免疫疗法提供新的途径。

首先,数据库分析发现TGFβ1下调NK细胞效应分子(GZMB、PRF1、IFNG和TNF)表达但上调组织驻留基因表达(ZNF683和ITGAE)。与此同时,作者分离2名伴有SMAD4单倍体不足的青少年息肉病综合征患者(JPS)NK细胞发现相比于野生型细胞,SMAD4+/-NK细胞对TGFβ1诱导的颗粒酶B和NKG2D表达下调不敏感,提示SMAD4可以作为干预的靶点。因此,作者假设敲减SMAD4可以改善NK细胞的抗肿瘤作用。通过Cas9-RNP技术,作者构建人SMAD4KO NK细胞。SMAD4KO NK在TGFβ1刺激时SMAD2、SMAD7和TGFβRII的表达与野生型NK一致。此外,RNA-seq分析指出该技术的实施并没有明显的脱靶效应。总之,作者通过Cas9-RNP技术安全、有效且特异的构建了人SMAD4KO NK细胞。

随后,作者评估SMAD4KO NK细胞的性质。转录组学揭示TGFβ1显著改变NK细胞的转录特征,例如下调颗粒酶、活化受体、趋化因子和细胞因子受体等。然而,SMAD4KO NK细胞却抵抗TGFβ1引起的这些改变,维持NK活化特征。体外实验进一步证实SMAD4KO NK细胞可以在TGFβ1存在时保持增殖和效应功能。总之,NK细胞SMAD4敲除抑制TGFβ1引起功能受损。体外杀伤实验确证SMAD4KO NK即使在TGFβ1存在时依然保持效应功能。体内NSG小鼠皮下移植瘤同样证实SMAD4KO NK相比于野生型NK细胞具有更稳定的抗肿瘤效果。总之,这些数据表明NK细胞SMAD4敲除不仅不影响NK细胞正常生理,还可以抵抗TGFβ1引起的NK功能受损,增强抗肿瘤效果。不仅如此,考虑到TGFβ1引起NK细胞黏附和趋化相关基因表达,且SMAD4KO NK也能抵抗这些改变。作者在体外3D肿瘤球模型中发现,尽管SMAD4KO NK和野生型NK具有一样的浸润数量,但SMAD4KO NK细胞浸润的位置更深,表明SMAD4KO NK具有更好的肿瘤组织穿透能力。

值得注意的是,作者在体外3D肿瘤球模型中发现相比于TGFβRI抑制剂SB-431542处理,SMAD4KO NK细胞在相同TGFβ1刺激时的肿瘤杀伤功能更好,提示SMAD4KO NK细胞在保留SMAD4非依赖的TGFβ信号通路的优势。SMAD4信号通路也能被其他TGFβ超家族成员激活,尤其是activin A可以抑制NK细胞功能。体外实验证实Activin A不能影响SMAD4KO NK细胞,但是显著抑制野生型NK细胞效应功能。因此,SMAD4KO NK细胞也能抵抗activin A引起的NK细胞功能抑制。

最后,作者评估SMAD4敲除的临床转化潜力。目前,临床使用的NK产品包括anti-CD19-CAR-NK细胞、脐带血干细胞来源NK和外周血扩增NK细胞。作者分别在这些细胞中使用前述方法构建SMAD4敲除NK细胞。令人振奋的是,SMAD4敲除在稳定条件下并不影响NK细胞性质,但是均能在TGFβ1刺激时维持更好的抗肿瘤效果,证实靶向NK细胞SMAD4敲除策略具有良好的临床转化潜力。

综上所述,这项研究揭示敲除SMAD4通过抵抗TGFβ和activin A引起的NK细胞功能抑制改善其抗肿瘤活性,为基于NK细胞的肿瘤免疫疗法提供新的改进策略。

原文链接:https://doi.org/10.1038/s41590-025-02103-z

制版人: 十一

参考文献

1. Loredana, Ruggeri., Marusca, Capanni., Elena, Urbani., Katia, Perruccio., Warren D, Shlomchik., Antonella, Tosti., Sabrina, Posati., Daniela, Rogaia., Francesco, Frassoni., Franco, Aversa., Massimo F, Martelli., Andrea, Velardi.(2002). Effectiveness of donor natural killer cell alloreactivity in mismatched hematopoietic transplants.Science, 295(5562), 0. doi:10.1126/science.1068440

2. Enli, Liu., David, Marin., Pinaki, Banerjee., Homer A, Macapinlac., Philip, Thompson., Rafet, Basar., Lucila, Nassif Kerbauy., et al.(2020). Use of CAR-Transduced Natural Killer Cells in CD19-Positive Lymphoid Tumors.N Engl J Med, 382(6), 0. doi:10.1056/NEJMoa1910607

3. Daniele V F, Tauriello., Sergio, Palomo-Ponce., Diana, Stork., Antonio, Berenguer-Llergo., Jordi, Badia-Ramentol., Mar, Iglesias., Marta, Sevillano., Sales, Ibiza., Adrià, Cañellas., et al. TGFβ drives immune evasion in genetically reconstituted colon cancer metastasis.Nature, 554(7693), 0.

4. Mariona, Cabo., Sara, Santana-Hernández., Marcel, Costa-Garcia., Anna, Rea., Roberto, Lozano-Rodríguez., et al.(2021). CD137 Costimulation Counteracts TGFβ Inhibition of NK-cell Antitumor Function.Cancer Immunol Res, 9(12), 0. doi:10.1158/2326-6066.CIR-21-0030

5. Daniele V F, Tauriello., Elena, Sancho., Eduard, Batlle.(2021). Overcoming TGFβ-mediated immune evasion in cancer.Nat Rev Cancer,22(1), 0. doi:10.1038/s41568-021-00413-6

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